Efecto del choque térmico sobre la eficiencia en la triploidización y la sobrevivencia de larvas de Rhamdia quelen

Effect of thermalshock on triploidization efficiency and survival of larvae of Rhamdia quelen

Contenido principal del artículo

Liliana Cardona
Martha Olivera
Mónica Botero
Ariel Tarazona

Resumen

La triploidía permite mejoras en el cultivo de peces, ya que se evita la madurez sexual, controla la superpoblación y aumenta la estabilidad en el desarrollo. Debido a su esterilidad, se pueden retrasar las cosechas, logrando peces de mayor peso y edad. El objetivo del estudio fue evaluar el efecto del choque térmico sobre la eficiencia en la triploidización y la sobrevivencia de larvas de Rhamdia quelen. Se emplearon dos hembras y tres machos sexualmente maduros, inducidos con extracto de hipófisis de carpa. Las ovas fueron inseminadas y siete minutos posfertilización, sometidas a choque térmico, con tres temperaturas: 34, 36 y 38°C y dos tiempos: 2 y 5 minutos. Posteriormente, fueron incubadas hasta el momento de la eclosión. Se registraron: temperatura, oxígeno y porcentajes de eclosión y de sobrevivencia. Se evaluó la ploidía de las larvas, mediante tinción con nitrato de plata de las regiones organizadoras de nucléolo (RON). El porcentaje de eclosión fue igual en el control y en los TTOs de 2 minutos; todos los TTOs de 5 minutos presentaron menor porcentaje de eclosión (p< 0.05). El porcentaje de sobrevivencia fue mayor al 91% en todos los tratamientos, sin diferencia estadística entre ellos. Los porcentajes de triploidía para los tratamientos con choque térmico, sin incluir el control, oscilaron entre 78,8 y 96,6%, sin observarse diferencia significativa entre ellos (p>0.05). Se concluye, que el choque térmico meiótico, con las tres temperaturas y con una duración de 2 y 5 minutos, induce la triploidía en Rhamdia quelen.

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ALONSO, M.; TABATA, Y.; RIGOLINO, M.; TSUKAMOTO, R. 2000. Effect of induced triploidy on fin regeneration of juvenile rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. J. Exp. Zool .(Brasil). 287:493-502.

ARVELO, F. 2002. Mitocondria y apoptosis. Acta Cient. Ven. 53:297-306.

ARAÚJO, H.; CORDERO, W.; RUGELES, C.; ATENCIO, V. 2003. Evaluación de las características seminales de Blanquillo Sorubim cuspicaudus inducido con ovaprim®. Rev. Col. Cienc. Pec. 16 (suplemento):78p.

BENFEY, T. 1999. The physiology and behavior of triploid fishes. Rev. Fish. Sci. (Inglaterra). 7(1):39-67.

BENFEY, T.; SUTTERLIN, A. 1984. Triploidy induced by heat shock and hydrostatic pressure in landlocked Atlantic salmon (Salmo salar L.). Aquacult (EE.UU). 42:359-367.

BORIN, L.; MARTINS, I.; OLIVEIRA, C. 2002. A natural triploid in Trichomycterus davisi (Siluriformes, Trichomycteridae): mitotic and meiotic characterization by chromosome banding and synaptonemal complex analyses. Genetica (EE.UU). 115:253-258.

CHIPPARI, A.; GOMES, L.; BALDISSEROTTO, B. 1999. Lethal temperature for silver catfish, Rhamdia quelen, fingerlings. J. Appl. Aquac. (Brasil). 9(4):11-21.

CRUZ-CASALLAS, P.E.; LOMBO-RODRÍGUEZ, D.A.; VELASCO-SANTAMARÍA, Y.M. 2005. Milt quality and spermatozoa morphology of captive Brycon siebenthalae (Eigenmann) broodstock. Aquacult. Res. 36:682-86.

DÍAZ, N.; NEIRA, R. 2005. Biotecnología aplicada a la acuicultura I. Biotecnologías clásicas aplicadas a la reproducción de especies cultivadas. Cie. Invest. Agraria (Chile). 32(1):45-59.

DUBEAU, S.; FENG, P.; TREMBLAY, G.; BRADLEY, T. 1998. Thermal shock of salmon in vivo induces the heat shock protein hsp 70 and confers protection against osmotic shock. Aquacult. 168:311-323.

FENOCCHIO, A.S.; BERTOLLO, L.A.C.; TAKAHASHI, C.S.; DIAS, A.L.; SWARÇA, A.C. 2003. Cytogenetic studies and correlated considerations on Rhamdiinae relationships (Pisces, Siluroidei, Pimelodidae). Cytologia. 68(4):363-368.

FLEURY, C.; MIGNOTE, B.; VAYSSIERE, J. 2002. Mitochondrial reactive oxygen species in cell death signaling. Biochimie (EE.UU). 84:131-141.

HARTL, F. 1996. Molecular chaperones in cellular protein folding. Nature. 381:571-580.

HERNÁNDEZ, D.; HUBERT, J.; BOURGEOIS, C. 1980. Ultrastructural localization of Ag-NOR stained proteins in the nucleolus during the cell cycle and in other nucleolar structures. Chromosoma (Inglaterra). 79: 42-362.

HILDEBRANDT, B.; WUST, P.; ALHERS, O.; DIEING, A.; SREENIVASA, G.; KERNER, T.; FELIX, R.; RIESS, H. 2002. The cellular and molecular basis of hyperthermia. Crit. Rev. Oncol. Hematol. (EE.UU). 43:33-56.

HUERGO, G.; ZANIBONI, E. 2006. Triploidy induction in JundiáRhamdiaquelen through hydrostatic pressure shock. J. Appl. Aquacult. 18(4):45-57.

HULATA, G. 2001. Genetics manipulations in aquaculture: a rewiew of stock improvement by classical and modern technologies. Genetica (EE.UU). 111:155- 173.

LINCOLN, R.; BYE, V. 1984. Triploid rainbows show commercial potential. Fish Farmer (EE.UU). 7:30- 32.

MAXIME, V. 2008. The physiology of triploid fish: current knowledge and comparisons with diploid fish. Fish Fisheries (Inglaterra). 9:67-78.

MORAES, V.; CEREALI, S.; FROEHLICH, O.; DIAS, A. 2007. Cytogenetic characterization of Rhamdia quelen (Siluriformes, Heptapteridae) from the Bodoquena Plateau, MatoGrosso do Sul, Brazil. Genetics Mol. Res. (Brasil).6(3):627-633.

PHILLIPS, R.; ZAJICEK, J.; IHSSEN, P.; JOHNSON, O. 1986. Application of silver staining to the identification of triploid fish cells. Aquacult. 54:313-319.

PIFERRER, F.; BEAUMONT, A.; FALGUIÈRE, J.C.; FLAJSHANS, M.; HAFFRAY, P.; COLOMBO, L. 2009. Polyploid fish and shellfish: Production, biology and applications to aquaculture for performance improvement and genetic containment. Aquacult. 293 (3- 4): 125-156.

PINEDA, H.; JARAMILLO, J.; ECHEVERRI, M.; OLIVERA, A. 2004. Triploidía en trucha arcoiris (Oncorhynchus mykiss): posibilidades en Colombia. Rev. Col. Cienc. Pec. 17(1):45-52.

RODRÍGUEZ, M. 2007. Fichas de especies. Acuicultura Uruguay. Disponible desde Internet en: http://www.dinara.gub.uy/fichas%20de%20especies/bagre%20negro.htm (con acceso 14/08/07).

ROLDÁN, G. 1992. Fundamentos de Limnología Neotroropical. Edit. Universidad de Antioquia, Medellín. 529p.

SCHMICKEL, R.; GONZALEZ, I.; ERICKSON, J. 1985. Nucleolus organizing genes on chromosome 21: recombination and non-disjunction. Ann. N.Y. Acad. Sci. 450:121-131.

SOLLER, F.; GUIMARÃES, R.; OROZCO, R.; SILVA, A. 2007. Triploidy induction by cold shock in the South American catfish, Rhamdia quelen (Siluriformes) (Quoy&Gaimard, 1824). Aquacult. 272S1:S110- S114.

STIVARI, M.; MARTINS-SANTOS, I. 2004. Karyotype diversity in two populations of Rhamdia quelen (Pisces, Heptapteridade). Cytologia (Japón). 69:25-34.

TABATA, Y. 2008. Biotecnologías aplicadas a truticultura. Rev. Col. Cienc. Pec. 21:455-522.

THORGAARD, G. 1983. Chromosome set manipulation and sex control. En: Hoard, W.S.; Randall, D.J.; Donaldson, E.M. (eds). Fish Physiology. Acad. Press. New York. p.405-434.

TIWARY, B.; KIRUBAGARAN, R.; RAY, A. 2004. The biology of triploid fish. Rev. Fish Biol. Fisheries (ReinoUnido).14:391-402.

VARELA, Z.; FISCHER, K.; FABIANO, G. 1982. Reproducción artificial de bagre negro Rhamdia sapo. Project reports. Montevideo. 34p. Disponible desde Internet en: http://www.fao.org/docrep/field/003/AC568S/AC568S01.htm (con acceso 15/08/2007).

VOZZI, A.; SÁNCHEZ, S.; PERMINGEAT, E. 2003. Inducción de triploidía en Rhamdia quelen (PISCES, PIMELODIDAE). Bol. Inst. Pesca, São Paulo. 29(1):87- 94.

WOYNAROVICH, E.; HORVÁTH, L. 1983. A propagação artificial de peixes de águas tropicais. Brasilia: FAO/ CODEVASF/CNPq. 220p.

ZHARSKAYA, O.; ZATSEPINA, O. 2007. The dynamics and mechanisms of nucleolar reorganization during mitosis. Cell Tissue Biol. (EE.UU). 1(4):277-292.

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