Hongos detectados en la entomofauna asociada a Espeletia pycnophylla

Fungi detected in insects associated to Espeletia pycnophylla

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Resumen

Algunas especies del género Espeletia sp. (Asteraceae) son afectados por hongos fitopatógenos e insectos en páramos de los Andes del Norte, amenazando su permanencia y la prestación de servicios que se les atribuye, como la regulación del ciclo hídrico. La escaza información sobre la afectación en el páramo de Paja Blanca (Nariño, Colombia), dificulta la comprensión de la dinámica del fenómeno y la formulación de estrategias de manejo. El objetivo de esta investigación fue identificar cambios en la composición de las comunidades de insectos asociados a E. pycnophylla durante el declive de las poblaciones de frailejones y evaluar si reflejan modificaciones en los hongos, asociados a dichos insectos. Para ello, se colectaron insectos en plantas de E. pycnophylla sanas y afectadas, a los que se aplicó índices ecológicos, para identificar posibles modificaciones en la diversidad y la composición; además, se aislaron e identificaron morfológica y molecularmente hongos, a partir de estructuras corporales de los insectos. Como resultado, se identificó una diversidad de insectos considerable y que no hay modificación en su composición de insectos entre los dos estados de frailejón analizados. Se logró aislar hongos, como Fusarium oxysporum, Botrytis sp., Epicoccum nigrum, Cladosporium sp., a partir de estructuras de los géneros de insectos Neomyopites sp., Diabrotica sp., Bradysia sp. y Dyscolus sp. Este estudio aporta información sobre la entomofauna presente en E. pycnopylla del páramo de Paja Blanca y hongos asociados a estructuras corporales, como el canal alimentario y aparato bucal de los insectos.

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ÁLVAREZ-LÓPEZ, C.; OSORIO-VEGA, O.; MARÍN-MONTOYA, M. 2013. Identificación molecular de microorganismos asociados a la rizosfera de plantas de vainilla en Colombia. Acta Biol. Col. 18(2):293-305.

ALZATE-QUINTERO, N.F. 2010. Insectos asociados a la necromasa de frailejón (Espeletia hartwegiana Cuatrec), en un páramo de Villamaría, Caldas. Agronomía (Manizales). 18(1):59-68.

AMAT-GARCÍA, G.; RÍOS-VARGAS, O. 1991. Caracterización de Microhábitats de la Artropofauna en páramos del Parque Nacional Natural Chingaza Cundinamarca, Colombia. Caldasia. 16(79):539-550.

ANACONA, A.; SABOGAL, S.; GARCÉS, E. 2005. Distribución de las especies de hongos asociadas al abrigo de hojas muertas de Espeletia grandiflora, en el páramo El Granizo. En: Bonilla M, Editor. Estrategias adaptativas de plantas del páramo y del bosque altoandino en la cordillera oriental de Colombia. Bogotá: Unibiblos. p.107-122.

BARNETT, H.L.; HUNTER, B.B. 1998. Illustrated genera of imperfect fungi. (4th ed). Amer Phytopathological Society APS Press. 240p.

BUITRAGO, S.; VANEGAS, L.; RAMOS, C. 2015. Pérdida de pubescencia foliar y sus efectos fisiológicos en Espeletia paipana (Asterales, Asteraceae), en el departamento de Boyacá-Colombia. Rev. Biol. Trop. 63(3):845-858. https://doi.org/10.13140/RG.2.1.4748.2723

CABEZAS, L.; CALDERON, C.; MEDINA, L.M.; BAHAMON, I.; CARDENAS, M.; BERNAL, A.J.; GONZALEZ, A.; RESTREPO, S. 2012. Characterization of cellulases of fungal endophytes isolated from Espeletia spp. Res.J. Microbiol. 50(6):1009-1013. https://doi.org/10.1007/s12275-012-2130-5

CAMACHO, M.; MARROQUIN, J. 2016. Análisis de insectos Coleoptera asociados a la afectación del frailejón Espeletia lopezii en el páramo de la vertiente occidental del Parque Nacional Natural el Cocuy. In Situ. 3:5-15.

CEPERO DE GARCÍA, M.C.; RESTREPO, S.; FRANCO, A.E.; CÁRDENAS, M.E.; VARGAS, N. 2012. Hongos anamórficos, conidiales, mitospóricos o ‘deuteromycetes. En: Cepero De García, M.C.; Restrepo Restrepo, S.; Franco-Molano, A.E.; Cárdenas Toquica, M.; Vargas Estupiñan, N. (eds) Biología De Hongos. 1st ed., Universidad De Los Andes, Colombia, Bogotá, D.C., Colombia. p.119-162.

CHAO, A.; GOTELLI, N.J.; HSIEH, T.C.; SANDER, E.L.; MA, K.H.; COLWELL, R.K.; ELLISON, A.M. 2014. Rarefaction and extrapolation with Hill numbers: a framework for sampling and estimation in species diversity studies. Ecological Monographs. 84(1):45-67. https://doi.org/10.1890/13-0133.1

CHECA, O.E.; DESCANCE, J.A.; TORO, M.X.; ÁLVAREZ, S.L.; SALAZAR, C. 2015. Caracterización molecular de Trichoderma spp. en arveja Pisum sativum L. Revista de Ciencias Agrícolas. 32(2):03-12. https://dx.doi.org/10.22267/rcia.153202.8

CORONADO-GONZALEZ, P.A.; VIJAY-SEGARAN, S.; ROBINSON, A.S. 2009. Functional Morphology of the mouthparts of the Adult Mediterranean Fruit Fly, Ceratitis capitata. J. Insect Sci. 8(73):1-11. https://doi.org/10.1673/031.008.7301

DUTTA, D.; PUZARI, K.C.; GOGOI, R.; DUTTA, P. 2014. Endophytes: exploitation as a tool in plant protection. Braz. Arch. Biol. Technol. 57:621-629. http://dx.doi.org/10.1590/S1516-8913201402043

ERASO-PUENTES, L.P.; AMARILLO-SUÁREZ, Á.R. 2016. Arthropods in necromass of two rosette plants species in different successional stages of Andean Páramo. Rev. Col. Entomol. 42(1):81-90. https://doi.org/10.25100/socolen.v42i1.6674

FERNÁNDEZ, F.; MASON, W. 2006. Introducción a los de Hymenoptera de la región neotropical. En: Fernández, F.; Sharkey, M.J. (eds.) Introducción a los Hymenoptera de la Región Neotropical. Universidad Nacional de Colombia. Sociedad Colombiana de Entomología SOCOLEN. Bogotá, Colombia. 893p.

FLORES-BAZAURI, W.; CHICO-RUÍZ, J.; CERNA-REBAZA, L.C. 2015. Actividad antagónica in vitro de Clonostachys rosea sobre Fusarium oxysporum, Alternaria solani y Botrytis cinerea. Revista Rebiol. 35(1):34-42.

GARCÍA-CASTAÑEDA, A.R.; DÍAZ-ALVARADO, Á.I.; CASTAÑEDA-GARZÓN, S.L.; CELESTINO, J.B. 2015. Diagnóstico preliminar de microorganismos fitopatógenos asociados a plántulas de Espeletia grandiflora Humb. & Bonpl. Propagadas para su conservación Ex situ. Fitopat. Col. 39(1):1-4.

GILLESPIE, D.R.; MENZIES, J.G. 1993. Fungus gnats vector Fusarium oxysporum f. sp. radicislycopersici. Ann. Applied Biology. 123(427):539-544. https://doi.org/10.1111/j.1744-7348.1993.tb04926.x

GRIFFITH, G.W.; SHAW, D.S. 1998. Polymorphisms in Phytophthora infestans: four mitochondrial haplotypes are detected after PCR amplification of DNA from pure cultures or from host lesions. Appl. Environ. Microbiol. 64(10):4007-4014. https://doi.org/10.1128/AEM.64.10.4007-4014.1998

HYDER, N.; COFFEY, M.D.; STANGHELLINI, M.E. 2009. Viability of Oomycete Propagules Following Ingestion and Excretion by Fungus Gnats, Shore Flies, and Snails. Plant Disease. 93(7):720-726. https://doi.org/10.1094/pdis-93-7-0720

JABER, S.; MERCIER, A.; KNIO, K.; BRUN, S.; KAMBRIS, Z. 2016. Isolation of fungi from dead arthropods and identification of a new mosquito natural pathogen. Parasit Vectors. 9(1):491. https://doi.org/10.1186/s13071-016-1763-3

JOST, L. 2006. Entropy and diversity. Oikos. 113(2):363-375. https://doi.org/10.1111/j.2006.0030-1299.14714.x

LAHLALI, R.; HIJRI, M. 2010. Screening, identification and evaluation of potential biocontrol fungal endophytes against Rhizoctonia solani AG3 on potato plants. FEMS Microbiology Letters. 311(2):152-159. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2010.02084.x

LEACH, J.G. 1940. Insect Transmission of Plant Diseases. Journal of the New York Entomological Society. 48:403-404.

MACHOTA, J.R.; BORTOLI, L.C.; BOTTON, M.; GRÜTZMACHER, A.D. 2013. Fungi that cause rot in bunches of grape identified in adult fruit flies (Anastrepha fraterculus) (Diptera: Tephritidae). Chil. J. Agric. Res. 73(2):34-35.

https://doi.org/10.4067/s0718-58392013000200018

MATTA, D.H.; CIVIDANES, F.J.; SILVA, R.J.; BATISTA, M.N.; OTUKA, A.K.; CORREIA, E.T.; MATOS, S.T. 2017. Feeding habits of Carabidae (Coleoptera) associated with herbaceous plants and the phenology of coloured cotton. Acta Scientiarum. Agronomy. 39(2):135-142. https://doi.org/10.4025/actasciagron.v39i2.32593

MILES, L.A.; LOPERA, C.A.; GONZÁLEZ, S.; CEPERO DE GARCÍA, M.C.; FRANCO, A.E.; RESTREPO, S. 2012. Exploring the biocontrol potential of fungal endophytes from an Andean Colombian Paramo ecosystem. BioControl. 57(5):697-710. https://doi.org/10.1007/s10526-012-9442-6

MORENO, C.E.; BARRAGÁN, F.; PINEDA, E.; PAVÓN, N. 2011. Reanalyzing alpha diversity: alternatives to understand and compare information about ecological communities. Revista Mexicana de Biodiversidad. 82(1):1249-1261.

MUÑOZ-GUERRERO, D.A. 2017. Transformaciones y prospectiva del paisaje en el páramo de Paja Blanca, Nariño, Colombia. Persp. Geog. 22(2):47-66. https://dx.doi.org/10.19053/01233769.7598

NÁRDIZ, P.M.; DE CAL, A. 2006. Biofungicidas y control biológico de hongos fitopatógenos: aplicación en la filosfera. Phytoma España. 182:59-63.

OGÓREK, R.; PLASKOWSK, E. 2011. Epicoccum nigrum for biocontrol agents in vitro of plant fungal pathogens. Commun. Agric. Appl. Biol. Sci. 76(4):691-697.

SALINAS, C.; FUENTES, L.S.; HERNÁNDEZ, L. 2013. Caracterización de los lepidópteros fitófagos asociados a la herbivoría de frailejones en la microcuenca de la quebrada Calostros del Parque Nacional Natural Chingaza. Revista Mutis. 3(1):1-22. https://doi.org/10.21789/22561498.838

SANTOS, A.; ZANETTI, R.; ALMADO, R.P.; SERRÃO, J.E.; ZANUNCIO, J.C. 2012. First report and population changes of Bradysia difformis (Diptera: Sciaridae) on Eucalyptus nurseries in Brazil. Fla. Entomol. 95(3):569-572. https://doi.org/10.1653/024.095.0305

SCHWEIGKOFLER, W.; OTROSINA, W.J.; SMITH, S.L.; CLUCK, D.R.; MAEDA, K.; PEAY, K.G.; GARBELOTTO, M. 2005. Detection and quantification of Leptographium wageneri the cause of black-stain root disease, from bark beetles (Coleoptera: Scolytidae) in Northern California using regular and real-time PCR. Can. J. For. Re. 35(8):1798-1808. https://doi.org/10.1139/x05-077

SHAMSHAD, A.; CLIFT, A.D.; MANSFIELD, S. 2009.The effect of tibia morphology on vector competency of mushroom sciarid flies. J. Appl. Entomol. 133(6):484-490. https://doi.org/10.1111/j.1439-0418.2008.01362.x

TACK, A.M.; DICKE, M. 2013. Plant pathogens structure arthropod communities across multiple spatial and temporal scales Funct. Ecol. 2013:633-645. https://doi.org/10.1111/1365-2435.12087

TRIPLEHORN, C.H.; JOHNSON, N. 2004. Borror and DeLong’s Introduction to the Study of Insects. 7th ed. Brooks/Cole, Ed. CA, United States. Cengage Learning, Inc. 888p.

ULYSHEN, M.D. 2016. Wood decomposition as influenced by invertebrates. Biolog. Reviews. 91(1):70-85. https://doi.org/10.1111/brv.12158

VARELA, A. 2014. Limitantes en la restauración ecológica: Estudio de caso de las afectaciones por patógenos en el parque Nacional Natural Chinagaza. En: Cubides, P.J.; Ramírez, W.; Cabrera, M.; Aguilar-Garavito, M.; Fajardo-Gutiérrez, F.; Vargas, W. eds. 1st ed. Restauración ecológica de los páramos de Colombia, Transformación y herramientas para su conservación. 296p.

VÁSQUEZ-RAMÍREZ, L.; CASTAÑO-ZAPATA, J. 2017. Manejo integrado de la marchitez vascular del tomate [Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici (SACC.) W.C. Snyder & H.N. Hansen]: una revisión. Rev. U.D.C.A Act. & Div. Cient. 20(2):363-374. https://doi.org/10.31910/rudca.v20.n2.2017.394

VILLA-MARTÍNEZ, A.; PÉREZ-LEAL, R.; MORALES-MORALES, H.A.; BASURTO-SOTELO, M.; SOTO-PARRA, J.M.; MARTÍNEZ-ESCUDERO, E. 2015. Situación actual en el control de Fusarium spp. y evaluación de la actividad antifúngica de extractos vegetales. Acta Agronómica. 64(2):194-205. https://doi.org/10.15446/acag.v64n2.43358

WHITE, T.; BRUNS, T.; LEE, S.; TAYLOR J. 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: Innis, M.A.; Gelfand, D.H.; Sninsky, J.J.; White, T.J. (eds.). PCR Protocols. A guide to methods and applications. Academic Press. London, England. p.315-322. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-372180-8.50042-1

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