Mutagénesis inducida en plantas de Solanum betaceum Cav. mediante el uso de dietil sulfato (DES)
Induced mutagenesis in Solanum betaceum Cav. plants by the use of diethyl sulphate (DES)
Barra lateral del artículo
XML
PDF
FLIP
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0.
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0.
Contenido principal del artículo
Resumen
La materia prima del fitomejoramiento es la variabilidad genética, que se presenta baja, en especies en proceso de domesticación, que no han sido sometidas a selección, como en Solanum betaceum. Una de las tecnologías para incrementar la variabilidad genética es la inducción de mutagénesis. El objetivo del estudio fue evaluar, a través de marcadores RAMs, las variaciones moleculares presentes en plántulas de S. betaceum, provenientes de semillas sometidas a diferentes concentraciones del agente mutante dietil sulfato (DES). Los loci polimórficos oscilaron entre 87,5 y 100 % y el número de alelos efectivos (Ne), entre 1,0 y 1,99. Los loci más polimórficos se observaron en TG, AG, ACA y CGA, que mostraron una heterosis media insesgada entre 0,34 y 0,51, que permite establecer que estos marcadores sean útiles para obtener mayor discriminación entre mutantes en S. betaceum. Las distancias genéticas oscilaron entre 0,30 y 1,0. El 81,28 % de estos registros se dieron entre 0,60 y 0,90; esto revela bajo nivel de cambios, debido al DES. Estos pequeños cambios contribuyeron a enriquecer la variabilidad genética de la muestra tratada con DES. Los marcadores RAMs fueron útiles para detectar cambios entre plantas provenientes de semillas tratadas con DES y plantas normales. La variabilidad genética entre tratamientos con DES fueron más altos que tratamientos sin DES. Las similitudes genéticas fueron bajas entre plantas tratadas y no tratadas y fueron altas, entre no tratadas. Los cambios producidos por DES fueron de baja magnitud; sin embargo, produjeron cambios en los niveles de variabilidad genética
Palabras clave:
Descargas
Detalles del artículo
Referencias (VER)
ACOSTA-QUEZADA, P.G.; RIOFRÍO-CUENCA, T.; ROJAS, J.; VILANOVA, S.; PLAZAS, M.; PROHENS, J. 2016. Phenological growth stages of tree tomato (Solanum betaceum Cav.), an emerging fruit crop, according to the basic and extended BBCH scales. Scientia Horticulturae. 199:216-223.
https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.12.045 DOI: https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.12.045
BEN TAMARZIZT, H.; BEN MUSTAPHA, S.; BARAKET, G.; ABDALLAH, D.; SALHI-HANNACHI, A. 2015. Assessment of genetic diversity and relationships among wild and cultivated Tunisian plums (Prunus spp) using random amplified microsatellite polymorphism markers. Genetics and Molecular Research. 14(1):1942-1956.
https://doi.org/10.4238/2015.march.20.4 DOI: https://doi.org/10.4238/2015.March.20.4
BHAGWAT, B.; DUNCAN, E.J. 1997. Mutation breeding of banana cv. Highgate (Musa spp., AAA Group) for tolerance to Fusarium oxysporum f. sp. cubense using chemical mutagens. Scientia Horticulturae. 73(1):11-22.
https://doi.org/10.1016/S0304-4238(97)00141-6 DOI: https://doi.org/10.1016/S0304-4238(97)00141-6
DELGADO-ALVARADO, E.A.; ALMARAZ-ABARCA, N.; ESCAMIROSA-TINOCO, C.; URIBE-SOTO, J.N.; ÁVILA-REYES, J.; TORRES-RICARIO, R.; CHAÍDEZ-AYALA, A.I. 2018. Potential of random amplified microsatellites (RAMS) to typify and discriminate varieties of Physalis ixocarpa Brot. ex Hornem. Emirates Journal of Food and Agriculture. 30(5):396-403.
https://doi.org/10.9755/ejfa.2018.v30.i5.1684 DOI: https://doi.org/10.9755/ejfa.2018.v30.i5.1684
DÍAZ GRANADA, L.; CANTO SÁENZ, M.; ALEGRE ORIHUELA, J.; CAMERENA MAYTA, F.; JULCA OTINIANO, A. 2017. Sostenibilidad social de los subsistemas productivos de tomate de árbol (Solanum betaceum Cav) en el Cantón Guachapala, Provincia de Azuay – Ecuador. Ecología Aplicada. 16(2):99-104.
https://dx.doi.org/10.21704/rea.v16i2.1013 DOI: https://doi.org/10.21704/rea.v16i2.1013
DICE, L.R. 1945. Measures of the amount of ecologic association between species. Ecology. 26(3):297-302.
https://doi.org/10.2307/1932409 DOI: https://doi.org/10.2307/1932409
DONINI, P.; SONNINO, A. 1998. Induced mutation in plant breeding: Current status and future outlook. En: Jain, S.M.; Brar, D.S.; Ahloowalia, B.S. (eds). Somaclonal variation and induced mutations in crop improvement. current plant science and biotechnology in Agriculture. Vol. 32. Springer. p.255-291. DOI: https://doi.org/10.1007/978-94-015-9125-6_14
ESTRADA SALAZAR, E.I.; VALLEJO CABRERA, F.A.; RAMÍREZ, H.; ESPITIA CAMACHO, M.M. 2010. Genética Vegetal. Universidad Nacional de Colombia (Palmira). 460p.
GANDHI, E.S.; SRI DEVI, A.; MULLAINATHAN, L. 2014. The effect of ethyl methane sulphonate and diethyl sulphate on chilli (Capsicum annuum L.) in M1 generation. International Letters of Natural Sciences. 10:18-23.
https://doi.org/10.18052/www.scipress.com/ILNS.10.18 DOI: https://doi.org/10.18052/www.scipress.com/ILNS.10.18
HART, G. 1983. The Occurrence of Multiple UPGMA Phenograms. En: Felsenstein, J. (ed). Numerical taxonomy. NATO ASI Series. Vol. 1. Springer (Berlin, Heidelberg). p.254-258.
https://doi.org/10.1007/978-3-642-69024-2_30 DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-642-69024-2_30
LAGOS-SANTANDER, L.; VALLEJO, F.A.; LAGOS-BURBANO, T.C.; DUARTE-ALVARADO, D.E. 2013. Correlaciones genotípicas, fenotípicas y ambientales, y análisis de sendero en tomate de árbol (Cyphomandra betacea Cav. Sendt.). Acta Agronómica. 62(3):215-222.
LOBO ARIAS, M. 2006. Recursos genéticos y mejoramiento de frutales andinos: una visión conceptual. Ciencia & Tecnología Agropecuaria. 7(2):40-54.
https://doi.org/10.21930/rcta.vol7_num2_art:68 DOI: https://doi.org/10.21930/rcta.vol7_num2_art:68
MAGALLÁN HERNÁNDEZ, D.; MARTÍNEZ, M.; HERNÁNDEZ SANDOVAL, L.; KEN OYAMA, Y. 2009. Estructura genética de poblaciones de Eriocaulon Bilobatum (Eriocaulaceae): una especie amenazada de humedales temporales. Boletín de la Sociedad Botánica de México. 85:81-88. DOI: https://doi.org/10.17129/botsci.2305
MORILLO C., A.C.; MORILLO C., Y.; MUÑOZ F., F.J.; VÁSQUEZ A., H.A.; ZAMORANO, A. 2005. Caracterización molecular con microsatélites aleatorios rams de la colección de mora, Rubus spp., de la Universidad Nacional de Colombia sede Palmira. Acta Agronómica. 54(2):15-24.
MORILLO C., Y.; MORILLO C., A.C.; MUÑOZ F., J.E.; BALLESTEROS P., W.; GONZÁLEZ, A. 2014. Molecular characterization of 93 genotypes of cocoa (Theobroma cacao L.) with random amplified microsatellites RAMs. Agronomía Colombiana. 32(3):315-325.
https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v32n3.46879 DOI: https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v32n3.46879
MORILLO CORONADO, A.C.; MORILLO CORONADO, Y.; PINZÓN SANDOVAL, E.H. 2014. Caracterización con RAMs de la colección de durazno (Prunus persica L. Batsch) existente en la Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia. Acta Agronómica. 63(4):367-376. DOI: https://doi.org/10.15446/acag.v63n4.42928
MORILLO PAZ, A.T.; VILLOTA CERÓN, D.E.; LAGOS-BURBANO, T.C.; ORDÓÑEZ JURADO, H.R. 2011. Caracterización morfológica y molecular de 18 introducciones de uchuva Physalis peruviana L. de la colección de la Universidad de Nariño. Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín. 64(2):6043-6053.
MUDIBU, J.; NKONGOLO, K.K.C.; MEHES-SMITH, M.; KALONJI-MBUYI, A. 2011. Genetic analysis of a soybean genetic pool using ISSR marker: effect of gamma radiation on genetic variability. International Journal of Plant Breeding and Genetics. 5(3):235-245.
http://dx.doi.org/10.3923/ijpbg.2011.235.245 DOI: https://doi.org/10.3923/ijpbg.2011.235.245
MUÑOZ F., J.E.; LOBO A., M.; MEDINA, C.I.; CAICEDO ARANA, Á.; MORILLO CORONADO, Y. 2012. Caracterización molecular de genotipos de plátano del Banco de Germoplasma de Corpoica Palmira, con uso de marcadores RAMs. Acta Agronómica. 61(5):28-29.
MUÑOZ FLÓREZ, J.E.; MORILLO CORONADO, A.C.; MORILLO CORONADO, Y. 2008. Microsatélites amplificados al azar (RAM) en estudios de diversidad genética vegetal. Acta Agronómica. 57(4):219-226.
MURASHIGE, T.; SKOOG, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum. 15(3):473-497.
https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
NEI, M. 1973. Analysis of gene diversity in subdivided populations. Proceedings of the National Academy of Sciences. 70(12):3321-3326.
https://doi.org/10.1073/pnas.70.12.3321 DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.70.12.3321
PEAKALL, R.; SMOUSE, P.E. 2006. Genalex 6: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research. Molecular Ecology Notes. 6(1):288-295.
https://doi.org/10.1111/j.1471-8286.2005.01155.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1471-8286.2005.01155.x
PEÑAFIEL L., N.; ARAHANA B., V.S.; TORRES P., M DE L. 2009. Evaluación de la variabilidad genética del tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.) en los cultivos de tres provincias del Ecuador por medio de marcadores microsatélites. Avances en Ciencias e Ingeniería. 1(1):69-74.
https://doi.org/10.18272/aci.v1i1.13 DOI: https://doi.org/10.18272/aci.v1i1.13
PRINA, L.; LANDAU, A.; PACHECO, M.G.; HOPP, H. 2010. Mutagénesis, TILLING y EcoTILLING. Parte II: Métodos para generar y analizar diversidad, Capítulo 4. En: Levitus G.; Echenique, V.; Rubinstein, C.; Hopp, E.; Mroginski, L. (Eds). Biotecnología y Mejoramiento Vegetal II. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria INTA, Consejo Argentino para la Información y Desarrollo de la Biotecnología ArgenBio (Argentina). p.217-228.
RAMÍREZ, F.; KALLARACKAL, J. 2019. Tree tomato (Solanum betaceum Cav.) reproductive physiology: A review. Scientia Horticulturae. 248:206-215.
https://doi.org/10.1016/j.scienta.2019.01.019 DOI: https://doi.org/10.1016/j.scienta.2019.01.019
RED DE INFORMACIÓN Y COMUNICACIÓN DEL SECTOR AGROPECUARIO, AGRONET. 2021. Reporte: Área, Producción y Rendimiento Nacional por Cultivo. Estadísticas agrícolas: tomate de árbol. Disponible desde Internet en: https://www.agronet.gov.co/estadistica/Paginas/home.aspx?cod=1 (con acceso 03/04/2021)
ROHLF, F.J. 1988. NTSYSpc Numerical taxonomy and multivariate analysis system version 2.2: getting started guide. Applied Biostatistics Inc (New York). 43p.
RUGELES-SILVA, P.A.; POSSO-TERRANOVA, A.M.; LONDOÑO, X.; BARRERA-MARÍN, M.; MUÑOZ-FLÓREZ, J.E. 2012. Caracterización molecular de Guadua angustifolia Kunth mediante marcadores moleculares RAMs. Acta Agronómica. 61(4):325-330.
WRIGHT, S. 1978. Evolution and the genetics of populations, variability within and among natural populations. Vol 4. University of Chicago Press (Chicago). 590p.
ZIETKIEWICZ E.; RAFALSKI, A.; LABUDA, D. 1994. Genome fingerprinting by Simple Sequence Repeat (SSR)-anchored Polymerase Chain Reaction Amplification. Genomics. 20(2):176-183.
https://doi.org/10.1006/geno.1994.1151 DOI: https://doi.org/10.1006/geno.1994.1151
Citado por
