Evaluación de la movilidad del semen criopreservado de caballos criollo colombiano por un sistema analizador de clase

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Autores

Giovanni Restrepo
Daniel Ocampo
Andrés Velásquez

Resumen

La reproducción juega un papel fundamental en el mejoramiento genético de los equinos. La criopreservación del se- men equino es una técnica complementaria a los procesos de biotecnología reproductiva; sin embargo, solamente el 40% de los caballos producen semen que se puede criopre- servar, con una alta variabilidad en su fertilidad. La confiabi- lidad de los métodos de evaluación del semen es trascendente para determinar su fertilidad potencial; no obstante, el análisis convencional por evaluación microscópica ha sido poco efectivo, en este sentido. El análisis de semen asistido por computador (CASA) permite una medición objetiva de la movilidad de semen. Esta investigación tuvo como objetivo comparar la evaluación de la movilidad del semen equino, mediante los métodos convencional y SCA® (CASA). El se- men de tres caballos de la raza criollo colombiano (tres eyaculados cada uno) fue congelado, en un diluyente (4% de yema de huevo, 5% de dimetilformamida). La movilidad del semen descongelado, se determinó de forma convencional por microscopia de contraste de fase y mediante el software SCA®. Para el análisis estadístico, se ajustó un modelo lineal generalizado (GLM) y se determinó la asociación entre las variables, a través de análisis de correlación y regresión. Se hallaron promedios de movilidad total de 54,3 ± 10,1 y 61,8 ± 13,9, para evaluación convencional y por el sistema SCA®, respectivamente. No se encontró diferencia significativa entre los métodos de análisis. Se concluye que el análisis de se- men equino, mediante el método convencional y el sistema SCA®, es equiparable, para analizar la movilidad del semen equino criopreservado.

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Referencias

1. BUSTAMANTE, I.; PEDERZOLLI, C.; SGARAVATTI, A.; GREGORY, R.; DUTRA, C.; JOBIM, M.; MATTOS, R. 2009. Skim milk-egg yolk based semen extender compensates for non-enzymatic antioxidant activity loss during equine semen cryopreservation. Anim. Reprod. 6(2):392-399.

2. CANDEIAS, M.; ALVARENGA, M.; TEORO DO CARMO, M.; NUNES, H.; RUSSO, M.; TORRES, R.; RIOS, A.; ZANDONADI, F. 2012. Semen cryopreservation pro- tocols of Mangalarga Marchador stallions. Rev. Bras. Zootec. 41(9):1989-1995.

3. COLENBRANDER, B.; GADELLA, B.; STOUT, T. 2003. The predictive value of semen analysis in the eva- luation of the stallion fertility. Reprod. Dom. Anim. 38(4):305-311.

4. GRAHAM, J.; MOCÉ, E. 2005. Fertility evaluation of fro- zen/thawed semen. Theriogenology. 64:492-504.

5. HIDALGO, M.; RODRÍGUEZ, I.; DORADO, J.; SÁNZ, J.; SOLER, C. 2005. Effect of sample size and staining methods on stallion sperm morphometry by the Sperm Class Analyze. Vet. Med. Czech. 50(1):24-32.

6. HOFFMANN, N.; OLDENHOF, H.; MORANDINI, C.; ROHN, K.; SIEME, H. 2011. Optimal concentrations of cryoprotective agents for semen from stallions that are classified ‘good’ or ‘poor’ for freezing. Anim. Reprod. Sci. 125:112-118.

7. HOOGEWIJS, M.; DE VLIEGHER, S.; DE SCHAUWER, C.; GOVAERE, J.; SMITS, K.; HOFLACK, G.; DE KRUIF, A.; VAN SOOM, A. 2011. Validation and usefulness of the Sperm Quality Analyzer V equine for equine semen analysis. Theriogenology. 75:189-194.

8. JASCO, D. 1992. Evaluation of stallion semen. Vet. Clin. North. Am. Equine Pract.8(1):129-48.

9. KATILA, T. 2001. In vitro evaluation of frozen-thawed stallion semen: A review. Acta Vet. Scand. 42(2):199- 217.

10. KUISMA, P.; ANDERSSON, M.; KOSKINEN, E.; KATILA, T. 2006. Fertility of frozen-thawed stallion semen cannot be predicted by the currently used laboratory methods. Acta Vet. Scand. 48:14.

11. LOZANO, D.; GIL, L.; ÁLVAREZ, C. 2011. Efecto de la adición de plasma seminal en el semen equino des- congelado. Sanidad Militar 67(3):284-290.

12. LOOMIS, P.R; GRAHAM, J.K 2008. Commercial semen freezing: individual male variation in cryosurvival and the response of stallion sperm to customized freezing protocols. Anim. Reprod. Sci. 105:119-128.

13. LOVE, C. 2011. Relationship between sperm motility, morphology and the fertility of stallions. Theriogenology. 76(3):547-557.

14. MAGISTRINI, M.; VIDAMENT, M.; CLEMENET, F. 1996. Fertility prediction in stallions. Anim. Reprod. Sci. 42:181-188.

15. MEDEIROS, A.; GOMES, G.; CARMO, M.; PAPA, F.; ALVA- RENGA, M. 2002. Cryopreservation of stallion sperm using different amides. Theriogenology. 58:273-276.

16. MESA, A.; HENAO, G. 2012. Efecto del colesterol y la dimetilformamida sobre parámetros posdescongela- ción en espermatozoides de caballos criollos colom- bianos. Rev. MVZ Córdoba. 17(1):2908-2815.

17. MIRÓ, J.; LOBO, V.; QUINTERO-MORENO, A.; MEDRA- NO, A.; PEÑA, A.; RIGAU, T. 2005. Sperm motility patterns and metabolism in Catalonian donkey semen. Theriogenology 63:1706-1716.

18. MORTIMER, S. 1997. A critical review of the physiologi- cal importance and analysis of sperm movement in mammals. Hum. Reprod. Update. 3:403-439.

19. PESCH, S.; BOSTEDT, H.; FAILING, K.; BERGMANN, M. 2006. Advanced fertility diagnosis in stallion semen using transmission electron microscopy. Anim. Re- prod. Sci. 91:285-298.

20. PROCTOR, J.; BOONE, W.; HIGDON, H. 2009. Compa- rison of the manual IVOS and SCA methods for se- men analysis reporting. J. Clin. Embryol. 12(4):5-7.

21. QUINTERO, A.; MIRÓ, J.; RIGAU, A.; RODRÍGUEZ, J. 2003. Identification of sperm subpopulations with specific motility characteristics in stallion ejaculates. Theriogenology. 59:1973-1990.

22. RODRÍGUEZ, A.M.; FERRUSOLA, C.O.; GARCÍA, B.M.; MORRELL, J.M.; TAPIA, J.A.; PEÑA, J.F. 2011. Freezing stallion semen with the new Caceres exten- der improves post thaw sperm quality and diminis- hes stallion-to-stallion variability. Anim. Reprod. Sci. 27(1-2):78-83.

23. STEPHENS, D.T.; HICKMAN, R.; HOSKINS, D.D. 1988. Description, validation and performance characte- ristics of a new computer-automated sperm motility analysis system. Biol. Reprod. 38:577-586.

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