Primer registro del Sugarcane mosaic virus en achira (Canna edulis Ker.) en Nariño, Colombia

Contenido principal del artículo

Autores

Carlos betancourt https://orcid.org/0000-0001-6573-4230
Carlos Salomón https://orcid.org/0000-0003-4213-3461
Santiago Montaño https://orcid.org/0000-0003-3216-5654
Claudia Salazar https://orcid.org/0000-0002-5461-2761
Pedro Uribe https://orcid.org/0000-0002-1568-9512
Angélica Martínez https://orcid.org/0000-0002-6121-6361
Lucely Muñoz https://orcid.org/0000-0002-4594-5476
Maritza Cuervo https://orcid.org/0000-0002-4418-699X

Resumen

La achira (Canna edulis Ker.) es una especie utilizada para la producción de almidón y alimentos artesanales. En Colombia, se estima un área cultivada de 800ha; en el departamento de Nariño, se viene presentando un disturbio de etiología viral, conocido por los agricultores como el rayado, por sus síntomas en las hojas, pero sin registros previos en esta zona. La enfermedad causa pérdidas en el rendimiento, aunque no se ha establecido con precisión. Con el objetivo de esclarecer la naturaleza de dicha patología y la identidad del patógeno asociado al problema, en la Universidad de Nariño, se realizó una investigación, mediante pruebas moleculares de PCR y RT-PCR, secuenciación, serología y microscopía electrónica, de muestras foliares colectadas en las zonas productoras. Los síntomas más sobresalientes en tejidos afectados fueron mosaico amarillo, moteado, rayado clorótico, aclaramiento de nervaduras entre otros. No se detectaron inclusiones citoplasmáticas similares a las producidas por Potyvirus, ni se observaron partículas virales, tampoco hubo resultados positivos con serología, pero sí se logró amplificación de un fragmento de cDNA, con cebadores específicos para Potyvirus y homología de 98% de las secuencias con el virus Sugarcane mosaic virus SCMV. Este es el primer reporte de SCMV en achira en Nariño, Colombia.

Palabras clave:

Detalles del artículo

Licencia

Creative Commons License
Esta obra está bajo licencia internacional Creative Commons Reconocimiento-NoComercial 4.0.

Los autores conservan los derechos de autor y ceden a la revista el derecho de la primera publicación, con el trabajo registrado con la Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0 Internacional., que permite a terceros utilizar lo publicado siempre y cuando mencionen la autoría del trabajo y a la primera publicación en esta revista.

Se recomienda a los autores incluir su trabajo en redes sociales como Researchgate y repositorios institucionales una vez publicado el artículo o hecho visible en la página de la revista, sin olvidar incluir el identificador de documento digital y el nombre de la revista.

 

Referencias

1. AGRONET. 2016. Estadísticas Agropecuarias. Cultivo de achira. Colombia. Disponible desde Internet en: https://www.agronet.gov.co/ (con acceso el 01/03/2019).

2. ALTSCHUL, S.; GISH, W.; MILLER, W.; MYERS, E.; LIPMAN, D. 1990. Basic local alignment search tool. J. Molecular Biology. 215:403-410. https://doi.org/10.1016/S0022-2836(05)80360-2

3. ARIZA LEÓN, E.; CASTRO CELY, A.L.; GÓMEZ CAÑÓN, J.D. 2013. Factibilidad del uso del almidón de achira como agente controlador de filtrado en lodos de perforación base agua. Rev Ion. 26(1):63-71.

4. ARMITAGE, C.R.; HUNGER, R.M.; SHERWOOD, J.L.; WEEKS, D.L. 1990. Relationship between development of hard red winter-wheat and expression of resistance to wheat soilborne mosaic-virus. Plant Dis. 74:356-359. https://doi.org/10.1094/PHYTO.2002.92.4.347

5. ALEXANDRE, M.A.V.; DUARTE, L.M.L.; CHAVES, A.L.R.; RAMOS, A.F.; HARAKAVA, R.; KITAJIMA, E.W. 2017. Canna paniculata as natural host of canna yellow streak virus in Brazil. Australasian Plant Dis. Notes 12:38. https://doi.org/10.1007/s13314-017-0264-3

6. CAICEDO, G.E.; ROZO, L.S.; RENGIFO, G. 2003. La achira, alternativa agroindustrial para áreas de economía campesina. Bogotá, Colombia: Corpoica. p.19.

7. CARVAJAL, M.; OLAYA, C.; LOZANO, I.; CUERVO, M.; CASTAÑO, M.; CUELLAR, W. 2014. Unraveling complex viral infections in cassava (Manihot esculenta Crantz) from Colombia. Virus Research. 186:76-86. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2013.12.011

8. CASTAÑO, M.; ARROYAVE, J.; GÁLVEZ, G.; MORALES, F. 1995. Cucumovirus afectando plantaciones de banano y plátano en Caicedonia (Valle del Cauca). Ascolfi Informa 21(1):14-15.

9. CASTAÑO, M.; GÁLVEZ, G.E.; ARROYAVE, J.A.; VELASCO, A.C.; MORALES, F.J. 1994. Aislamiento de una cepa colombiana del virus del mosaico del banano. Fitopatología Colombiana 18:130-134.

10. CASTILLO, B.S.; YARWOOD, C.E.; GOLD, A.H. 1956. Canna mosaic virus. Plant Disease Report. 40:169-172.

11. CHAUHAN, R.P.; RAJAKARUNA, P.; VERCHOT, J. 2015. Complete genome sequence of nine isolates of canna yellow streak reveals its relationship to the sugarcane mosaic virus (SCMV) subgroup of potyviruses. Arch Virol. 160:837-844. https://doi.org/10.1007/s00705-014-2327-5

12. CHOI, S.K.; CHOI, J.K.; PARK, W.M.; RYU, K.H. 1999. RT-PCR detection and identification of three species of cucumoviruses with a genusspecific single pair of primers. J. Virol. Methods. 83:67-73. http://dx.doi.org/10.1016/S0166-0934(99)00106-8

13. CLARK, M.F.; ADAMS, A.N. 1977. Characteristics of the Microplate Method of Enzyme-Linked Immunosorbent Assay for the Detection of Plant Viruses. J. Gen. Virol. 34:475-483. https://doi.org/10.1099/0022-1317-34-3-475

14. CONSOLIDADO AGROPECUARIO – NARIÑO. 2015. Secretaría De Agricultura y Medio Ambiente de Nariño Corporación Colombia Internacional CCI. Cultivos Anuales. 40p.

15. Corporación colombiana de investigación agropecuaria - CORPOICA. 2001. Análisis socio-económico y técnico de la mini-cadena agroindustrial de la achira. Reporte técnico. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica) y la Organización de las Naciones Unidas para el Desarrollo Industrial (Onudi), Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural de Colombia, Bogotá. 97p.

16. HOLLINGS, M.; STONE, O.M. 1971. Tomato aspermy virus. CMI/AAB Descriptions of Plant Viruses. 79:1-3.

17. HUNGER, R.M.; SHERWOOD, J.L. 1985. Use of symptomatology and virus concentration for evaluating resistance to wheat soilborne mosaicvirus. Plant Dis. 69:848-850.

18. HULL, R. 2014. Plant Virology. Five edition. Academic Press. 1118p. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-384871-0.00001-7

19. LOCKHART, B. 1988. Occurrence of Canna yellow mottle virus in North America. Acta Hortic. 234:69-72.

20. KASEMWONG, K.; UTTAPAP, D.; PIYACHOMKWAN, K.; TAKEDA, Y. 2003. A comparative study of edible canna (Canna edulis) starch from different cultivars. Part I. Chemical composition and physicochemical properties. Carbohydr Polym. 53(3):317-324. http://dx.doi.org/10.1016/S0144-8617(03)00081-X

21. KUMARI, A.; RAJ, R.; KUMAR, S.; CHAUHAN, P.S.; RAJ, S.K. 2016. Coexistence of three virus genera (Badnavirus, Potyvirus and Cucumovirus) in Canna species in India. Ann Virol Res. 2(1):1008. Disponible desde Internet en: https://www.jscimedcentral.com/Virology/virology-2-1008.pdf (con acceso el 01/03/2019).

22. MOINI, A.; IZADPANAH, K. 2000. New hosts for Tomato spotted wilt virus in Tehran. Iranian J. Plant Pathology. 36:104-105.

23. MOMOL, M.T.; LOCKHART, B.E.L.; DANKERS, H.; ADKINS, S. 2004. Canna yellow mottle virus detected in canna in Florida. Plant Health Progress. 5(1). https://doi.org/10.1094/PHP-2004-0809-01-HN

24. MONGER, W.A.; HARJU, V.; SKELTON, A.; SEAL, S.E.; MUMFORD, R.A. 2007. Canna yellow streak virus: a new Potyvirus associated with severe symptoms in canna. Arch Virol 152:1527-1530. https://doi.org/10.1007/s00705-007-0977-2

25. PAPPU, H.; DRUFFEL, K. 2008. Canna yellow mottle virus in Canna spp. in Washington State. Plant Dis. 92:1136. https://doi.org/10.1094/PDIS-92-7-1136C.

26. PRINCE, J.; DAVIS, R.; WOLF, T.; LEE, I.; MOGEN, B.; DALLY, E.; BERTACCINI, A.; CREDI, R.; BARBA, M. 1993. Molecular detection of diverse mycoplasma like organisms (MLOs) associated with grapevine yellows and their classification with aster yellows, X - disease, and elm yellows MLOs. Phytopathology. 8310:1130-1137. https://doi.org/10.1094/Phyto-83-1130

27. RAJAKARUNA, P.; SHAFIEKHANI, M.; KIM, T.; PAYTON, M.; CHAUHAN, R.; VERCHOT, J. 2014. Production of discernable disease phenotypes in canna by five plant viruses belonging to the genera Potyvirus, Cucumovirus, and Badnavirus. Plant Pathol. 63:821-830. https://doi.org/10.1111/ppa.12169

28. REICHEL, H. 2007. Partículas flexuosas de aspecto viral aisladas de achira (Canna edulis Ker.) afectada por clorosis en Colombia. Agronomía Colombiana 25(2):330-332.

29. REICHEL, H.; BELALCÁZAR, S.; MÚNERA, G.; ARÉVALO, E.; NARVÁEZ, J. 1996. Primer reporte del virus del rayado del banano (BSV) afectando plantaciones de plátano (Musa AAB Simmonds), caña de azúcar (Sochorum offícinorum) y achira (Canna edulis) en Colombia. Revista Corpoica. 1(1):35-39. https://doi.org/10.21930/rcta.vol1_num1_art:150

30. REICHEL, H.; KUMMERT, J.; LEPOIVRE, P.; BELALCÁZAR, S.; NARVÁEZ, J. 1995. Ingeniería genética para la resistencia al virus del mosaico del pepino (CMV) en especies comerciales de Musa spp. en Colombia. Revista Agrocambio. 1(2):9-16.

31. REICHEL, H.; BELALCÁZAR, S.; MUNERA, G.; ARÉVALO, E.; NARVÁEZ, J. 1997. First report of banana streak virus infecting sugarcane and arrowroot in Colombia. Plant Dis. 81:552. https://doi.org/10.1094/PDIS.1997.81.5.552B

32. ROCA, W.; MANRIQUE, I. 2005. Valorización de los recursos gené¬ticos de raíces y tubérculos andinos para la nutrición y la salud. Agrociencia. 9(1-2):195-201.

33. RODRÍGUEZ, G.A.; GARCÍA, H.R.; CAMACHO, J.H.; ARIAS F.L. 2003. El almidón de achira o sagú (Canna edulis Ker), manual técnico para su elaboración. Corpoica Y Programa nacional de Transferencia de tecnología Agropecuaria. Tibaitatá, Colombia, Corpoica. 33p.

34. SKELTON, A.; DALY, M.; NIXON, T.; HARJU, V.; MUMFORD, R.A. 2007. First record of Bean yellow mosaic virus infecting a member of the orchid genus Dactylorhiza. Plant Pathol. 56:344-344. https://doi.org/10.1111/j.1365-3059.2007.01530.x

35. SMITH, G.; VAN DE VELDE, R. 1994. Detection of Sugarcane Mosaic Virus and Fiji Disease Virus in Diseased Sugarcane using the Polymerase Chain Reaction. Plant Disease. 78:557-561. http://dx.doi.org/10.1094/PD-78-0557

36. TANAKA, N. 2004. The utilization of edible Canna plants in southeastern Asia and southern China. Econ Bot. 58(1):112-114. https://doi.org/10.1663/0013-0001(2004)058[0112:NOEP]2.0.CO;2

37. TANG, W.; XU, X.H.; SUN, H.W.; LI, F.; GAO, R.; YANG, S.K.; LU, X.B.; LI, X.D. 2016. First report of Sugarcane mosaic virus infecting Canna spp. in China. Plant Disease. 100:2541. https://doi.org/10.1094/PDIS-05-16-0726-PDN

38. TORRES, L.J. 2004. Tecnología para el cultivo del sagú o achira (Canna edulis Ker). Ed. Produmedios (Colombia). 5-6p.

39. VERCHOT, J.; RAJAKARUNA, P. 2013. Plant viruses infecting cannas. Extension Report EPP-7327, Oklahoma State University, Stillwater.

40. YAMASHITA, S.; NATSUAKI, T.; DOI, Y.; YORA, K. 1985. Canna yellow mottle virus, a non-enveloped small-bacilliform virus in Canna sp. Ann. Phytopath. Soc. Japan. 51:642-646.

41. ZAKUBANSKIY, A.V.; MITROFANOVA, I.V.; CHIRKOV, S.N. 2017. Molecular characterization of viruses infecting canna in Russia. Plant Pathology. https://doi.org/10.1007/s10658-017-1241-6

42. ZHANG, D.D.; BAI, G.H.; HUNGER, R.M.; BOCKUS, W.W.; YU, J.M.; CARVER, B.F.; BROWN GUEDIRA, G. 2011. Association study of resistance to soilborne wheat mosaic virus in US winter wheat. Phytopathology. 101:1322-1329. https://doi.org/10.1094/PHYTO-02-11-0041

43. ZIV, A.; FUENTES, C. 2007. Improved purification and PCR amplification of DNA from elemental samples. Fems Microbiol Lett. 272(2):269-275. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2007.00764.x

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.