Migración de Leishmania (Viannia) panamensis y su persistencia en piel sana de hamster

Migration of Leishmania (Viannia) panamensis and its persistence in healthy skin of hamster

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Lina M Carrillo Bonilla
Andrés Montoya
Natalia Arbeláez
Horacio Cadena
Jaime Ramírez
Sara M. Robledo

Resumen

Las leishmaniasis son endémicas en >98 países con 14 millones de infectados. Leishmania sobrevive en los mamíferos aún después del tratamiento pero se desconoce su capacidad de persistir en piel sana e infectar vectores. Para demostrar la migración de Leishmania (Viannia) panamensis a piel sana, su persistencia en estos sitios durante estados crónicos de infección y la infectividad de los parásitos persistentes para Lutzomyia longipalpis, se inocularon 10 hámsters intradérmicamente en pata con 2x107promastigotes de L. (V.) panamensis. Los hámsters se sacrificaron a las 13 (fase aguda) y 53 (fase crónica) semanas post-infección. Biopsias de lesión, piel sana y otros tejidos se analizaron por reacción en cadena de la polimerasa (PCR) con el gen Hsp70 y qPCR con el gen DNA polymerase. La transmisión de los parásitos a Lu. longipalpis se determinó mediante xenodiagnóstico. Todas las muestras de fase aguda (excepto oreja contralateral) y todas las muestras de fase crónica fueron positivas, aunque la positividad en fase crónica fue menor que en fase aguda. Dos animales de fase aguda y un animal de fase crónica fueron infecciosos al vector, después de alimentarse sobre la lesión. No hubo ningún insecto positivo en los alimentados sobre piel sana. Se reporta por primera vez la diseminación y persistencia de L. (V) panamensis, y se confirma la persistencia en un periodo de 53 semanas. Sin embargo la carga parasitaria en tejidos diferentes al sitio de inóculo fue baja y no se detectó su transmisión al vector. La PCR con Hsp70 y qPCR con DNA polymerase son técnicas útiles en la determinación del estatus infeccioso en los hospederos vertebrados. 

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ALVAR, J.; VÉLEZ, I.D.; BERN, C.; HERRERO, M.; DESJEUX, P.; CANO, J.; JANNIN, J.; DEN BOER, M. 2012. WHO Leishmaniasis Control Team. Leishmaniasis worldwide and global estimates of its incidence. PLoS One. 7(5):e35671.

BARRAL, A.; GUERREIRO, J.; BOMFIM, G.; CORREIA, D.; BARRAL-NETTO, M.; CARVALHO, E.M. 1995. Lymphadenopathy as the first sign of human cutaneous infection by Leishmania braziliensis. Am. J. Trop. Med. Hyg. 53(3):256-9.

BOGDAN, C.; GESSNER, A.; SOLBACH, W.; ROLLINGHOF, M. 1996. Invasion, control and persistence of Leishmania parasites. Curr. Opin. Immunol. 8(4):517-25.

DAVOUST, B.; MARY, C.; MARIÉ, J.L. 2014. Detection of Leishmania in red foxes (Vulpes vulpes) from southeastern france using real-time quantitative PCR. J. Wildl. Dis. 50(1):130-2.

DE PAIVA, C.M.; DANTAS-TORRES, F.; DA CUNHA GONÇALVES DE ALBUQUERQUE, S.; SILVA DE MORAIS, R.C.; DE BRITO, M.E.; OTRANTO, D.; BRANDÃO-FILHO, S.P. 2013. Quantitative real time PCR assays for the detection of Leishmania (Viannia) braziliensis in animals and humans. Mol. Cell. Probes. 27(3-4):122-8.

DE RUITER, C.M.; VAN DER VEER, C.; LEEFLANG, M.M.; DEBORGGRAEVE, S.; LUCAS, C.; ADAMS, E.R. 2014. Molecular tools for diagnosis of visceral leishmaniasis: systematic review and meta-analy sis of diagnostic test accuracy. J. Clin. Microbiol. 9:3147-55.

FOLGUEIRA, C.; REQUENA, J.M. 2007. A postgenomic view of the heat shock proteins in kinetoplastids. FEMS Microbiol. Rev. 31(4):359-377.

FRAGA, J.; MONTALVO, A.M.; DE DONCKER, S.; DUJARDIN, J.C.; VAN DER AUWERA, G. 2010. Phylogeny of Leishmania species based on the heat-shock protein 70 gene. Infect. Genet. Evol. 10(2):238-245

GARCIA, L.; KINDT, A.; BERMUDEZ, H.; LLANOSCUENTAS, A.; DE DONCKER, S.; AREVALO, J.; WILBER, QUISPE.; TINTAYA, K.; DUJARDIN, J.C. 2004. Culture-independent species typing of neotropical Leishmania for clinical validation of a PCRbased assay targeting heat shock protein 70 genes. J. Clin. Microbiol. 42(5):2294-2297.

GARCIA, A.L.; PARRADO, R.; DE DONCKER, S.; BERMUDEZ, H.; DUJARDIN, J.C. 2007. American tegumentary leishmaniasis: direct species identification of Leishmania in non-invasive clinical samples. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 101(4):368-371.

GONZÁLEZ, L.M.; VÉLEZ, I.D. 2006. Miltefosine for disseminated cutaneous leishmaniasis.Biomedica. 26(Suppl 1):13-16.

GRAÇA, G.C.; VOLPINI, A.C; ROMERO, G.A.; OLIVEIRA NETO, M.P.; HUEB, M.; PORROZZI, R.; BOITÉ, M.C.; CUPOLILLO, E. 2012. Development and validation of PCR-based assays for diagnosis of American cutaneous leishmaniasis and identification of the parasite species. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 107(5):664-674.

HOMMEL, M.; JAFFE, C.L.; TRAVI, B.; MILONI, G. 1995. Experimental models for leishmaniasis and for testing anti-leishmanial vaccines. Ann. Trop. Med. Parasitol. 89(Suppl 1):55-73.

MARTÍNEZ, J.E.; TRAVI, B.L,; VALENCIA, A.Z,; SARAVIA, N.G. 1991 Metastatic capability of Leishmania (Viannia) panamensis and Leishmania (Viannia) guyanensis in golden hamsters. J. Parasitol. 77(5):762-768.

MARTÍNEZ, J.E.; VALDERRAMA, L.; GAMA, V.; LEIBY, D.A.; SARAVIA, N.G. 2000. Clonal diversity in the expression and stability of the metastatic capability of Leishmania guyanensis in the golden hamster. J. Parasitol. 86(4):792-799.

MENDONÇA, M.G.; DE BRITO, M.E.; RODRIGUEZ, E.H.; BANDEIRA, V.; JARDIM, M.L.; ABATH, F.G. 2004. Persistence of Leishmania parasites in scars after clinical cure of american cutaneous Leishmaniasis: Is there a tterile cure? J. Infect. Dis. 189(6):1018- 1023.

MONTALVO, A.M.; MONZOTE, L.; FRAGA, J.; MONTANO, I.; MUSKUS, C.; MARIN, M.; DE DONCKER, S.; VÉLEZ, I.D.; DUJARDIN, J.C. 2008. PCR-RFLP and RAPD for typing neotropical Leishmania. Biomedica. 28(4):597-606.

MONTALVO, A.M.; NODARSE, J.F.; GOODRIDGE, I.M.; FIDALGO, L.M.; MARIN, M.; VAN DER AUWERA, G.; DUJARDIN, J.C.; VÉLEZ, I.D.; MUSKUS, C. 2010. Differentiation of Leishmania (Viannia) panamen- sis and Leishmania (V.) guyanensis using BccI for hsp70 PCR-RFLP. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 104(5):364-367

NICOLAS, L.; SIDJANSKI, S.; COLLE, J.H.; MILON, G. 2000. Leishmania major reaches distant cutaneous sites where it persists transiently while persisting durably in the primary dermal site and its draining lymph node: a study with laboratory mice. Infect. Immunology. 68(12):6561-6566.

OSORIO, Y.; MELBY, P.C.; PIRMEZ, C.; CHANDRASEKAR, B.; GUARIN, N.; TRAVI, B.L. 2003. The site of cutaneous infection influences the immunological response and clinical outcome of hamsters infected with Leishmania panamensis. Parasite Immunol. 25(3):139-148.

ROBLEDO, S.M.; CARRILLO, L.M.; DAZA, A.; RESTREPO, A.M.; MUÑOZ, D.L.; TOBON, J.; MURILLO, J.D.; LOPEZ, A.; RIOS, C.; MESA, C.V.; UPEGUI, Y.A.; VALENCIA-TOBON, A.; MONDRAGON-SHEM, K.; RODRIGUEZ, B.; VÉLEZ, I.D. 2012. Cutaneous leishmaniasis in the dorsal skin of hamsters: a useful model for the screening of antileishmanial drugs. J. Vis. Exp. 21(62) pii: 3533.

ROMERO, I.; TELLEZ, J.; SUAREZ, Y.; CARDONA, M.; FIGUEROA, R.; ZELAZNY, A.; SARAVIA, N. 2010. Viability and burden of Leishmania in extralesional sites during human dermal leishmaniasis. PLoS Negl. Trop. Dis. 14:4(9). pii: e819.

ROQUE, A.L.R.; JASEN, A. 2014. Wild and synanthropic reservoirs of Leishmania species in the Americas. Int. J. Parasitol. Parasites Wild. 3(3):251-262

RUIJTER, J.M.; RAMAKERS, C.; HOOGAARS, W.M.; KARLEN, Y.; BAKKER, O.; VAN DEN HOFF, M.J.; MOORMAN, A.F. 2009. Amplification efficiency: linking baseline and bias in the analysis of quantitative PCR data. Nucleic Acids Res. 37(6):e45.

SANTOS, T.R.; CARREIRA, V.S.; FERRARI, H.F.; MOREIRA, M.A.; LUVIZOTTO, M.C. 2014. Comparison of PCR with stained slides of bone marrow and lymph nodes aspirates with suspect diagnosis for leishmaniasis. Acta Trop. 140C:137-140

TITUS, R.G.; MARCHAND, M.; BOON, T.; LOUIS, J.A. 1985. A limiting dilution assay for quantifying Leishmania major in tissues of infected mice. Parasite Immunol. 7(5):545-555.

TOZ, S.O.; CULHA, G.; ZEYRECK, F.Y.; ERTABAKLAR, H.; ALKAN, M.Z.; VARDALI, A.T.; GUNDUZ, C.; OZBEL, Y. 2013. A real-time ITS1-PCR based method in the diagnosis and species identification of Leishmania parasite from human and dog clinical samples in Turkey. PLoS Negl. Trop. Dis. 7(5):e2205.

TRAVI, B.L.; OSORIO, Y.; MELBY, P.C.; CHANDRASEKAR, B.; ARTEAGA, L.; SARAVIA, N.G. 2002. Gender is a major determinant of the clinical evolution and immune response in hamsters infected with Leishmania spp. Infect. Immun. 70(5):2288-2296

VÉLEZ, I.D.; CARRILLO, L.M.; LÓPEZ, L.; RODRÍGUEZ, E.; ROBLEDO, S.M. 2012. An epidemic outbreak of canine cutaneous leishmaniasis in Colombia caused by Leishmania braziliensis and Leishmania panamensis. Am J Trop Med Hyg. 86(5):807-811.

VERGEL, C.; PALACIOS, R.; CADENA, H.; POSSO, C.J.; VALDERRAMA, L.; PEREZ, M.; WALKER, J.; TRAVI, B.L.; SARAVIA, N.G. 2006. Evidence for Leishmania (Viannia) parasites in the skin and blood of patients before and after treatment. J. Infect. Dis. 15;194(4):503-511

WALTON, B.C.; SHAW, J.J.; LAINSON, R. 1977 Observations on the in vitro cultivation of Leishmania braziliensis. J. Parasitol. 63(6):1118-1119.

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